神經(jīng)干細胞培養(yǎng)分化成多巴胺神經(jīng)元的一點經(jīng)驗
一、神經(jīng)干細胞的分離和傳代
無菌條件下取新生SD大鼠(出生48h內(nèi))腦組織，D-Hanks液充分漂洗后，在解剖顯微鏡下剝離腦膜，準確分離海馬，用眼科剪將海馬剪碎后，再轉(zhuǎn)移到DMEM/F12(1:1)加B27 和bFGF(20ng/ml)的無血清培養(yǎng)基，吸管吹打機械分離制作單細胞懸液，臺盼藍染色后細胞計數(shù)，調(diào)整細胞濃度為5×104~5個/ml，置于24孔培養(yǎng)板中培養(yǎng)，每孔加入細胞懸液500μl。待神經(jīng)球形成后再次機械分離克隆制作單細胞懸液，仍以5×104個/ml的細胞濃度置于24孔培養(yǎng)板中培養(yǎng)，每孔加入細胞懸液500μl。此后每7d機械分離克隆傳代1次，方法同前。
二、BrdU標記
將BrdU溶于無血清培養(yǎng)基，解剖顯微鏡下過濾除菌后加入神經(jīng)球形成后再次機械分離克隆制作的單細胞懸液中(BrdU終濃度為5μmol/L)，培養(yǎng)7d待新的神經(jīng)球形成后，將神經(jīng)球轉(zhuǎn)移到預(yù)先涂布有多聚賴氨酸的培養(yǎng)板中，貼壁2h行BrdU免疫細胞化學染色。
三、 經(jīng)干細胞的誘導(dǎo)分化
選取部分上述傳代后形成的次代神經(jīng)球種植于預(yù)先涂布有多聚賴氨酸的24孔培養(yǎng)板中，并加入有血清培養(yǎng)基(含10％胎牛血清的DMEM/F12)，一部分神經(jīng)球于貼壁2h后行Nestin免疫細胞化學染色，另一部分神經(jīng)球繼續(xù)培養(yǎng)，觀察其生長分化情況。另將一部分次代神經(jīng)球機械分離制成單細胞懸液后加入有血清培養(yǎng)基貼壁培養(yǎng)，7d后分別行Tuj1 、GFAP 、Galc 免疫細胞化學染色。
四、 條件培養(yǎng)液的制備
取1g雞胚的后肢骨骼肌組織，加入9mlD-Hanks液中冰浴勻漿15min，離心獲得上清液，過濾除菌后，加兩倍體積DMEM/F12培養(yǎng)基制成條件培養(yǎng)液備用。
五、 經(jīng)干細胞的定向誘導(dǎo)分化
將一部分次代神經(jīng)球機械分離制成單細胞懸液后分別加入條件培養(yǎng)液和有血清培養(yǎng)基(含10％胎牛血清的DMEM/F12)中對照貼壁培養(yǎng)，7d后均行ChAT免疫細胞化學染色。
六、 免疫細胞化學染色
培養(yǎng)細胞用4％多聚甲醛固定30min后，PBS充分漂洗，然后按ABC法分別行鼠抗Nestin，鼠抗Tuj1，兔抗GFAP，鼠抗Galc，鼠抗Brdu免疫細胞化學染色，用DAB和H2O2作為呈色劑，陽性著色為棕黃色。具體方法為：
（1） 0.05M PBS漂洗 10min×3次
（2） 0.3%H2O2/0.05M PBS室溫 30min
（3） 0.3%Triton-100/0.05M PBS 37 ℃，15min
（4） 0.05M PBS漂洗 10min×3次
（5） 5%羊血清/0.05M PBS 37 ℃，15min
（6） I抗（2%羊血清/0.05M PBS配） 4℃，48h
（7） 0.05M PBS漂洗 10min×3次
（8） II抗（2%羊血清/0.05M PBS配，1：200） 37 ℃，1.5h
（9） 0.05M PBS漂洗 10min×3次
（10） AB復(fù)合物（0.05M PBS配，1：100） 37 ℃，1.5h
（11） 0.05M PBS漂洗 10min×3次
（12） Tris-HCl緩沖液 37 ℃，15min
（13） DAB顯色 20min
（14） 蒸餾水漂洗 10min×3次
然后，為進一步證明實驗組的細胞是膽堿能神經(jīng)元，將已作完ChAT免疫細胞化學染色的細胞用PBS終止顯色以及進一步封閉非特異性結(jié)合位點后， 仍用ABC法行Tuj1免疫細胞化學染色，用含有NiCl的DAB和H2O2作為呈色劑,雙標陽性細胞著色為藍黑色。
（四） 數(shù)據(jù)分析
計數(shù)兩組的ChAT免疫陽性細胞率，用SPSS11.0統(tǒng)計分析軟件包處理數(shù)據(jù)。根據(jù)數(shù)據(jù)資料的特征采用X2檢驗（chi-square test）進行顯著性檢驗。