一、實驗?zāi)康?/div>
學(xué)習(xí)組織培養(yǎng)方法,了解癒合組織的形成和培養(yǎng)基配置及植物再分化過程。
二、實驗原理
處理分生組織較旺盛的細胞,形成癒傷組織(callus)再由癒傷組織分化為根、芽等植物各部,繼續(xù)培養(yǎng)成完整植株。以植物組織為培植體,在適當(dāng)?shù)呐囵B(yǎng)基上誘發(fā)不定芽,發(fā)芽可長出自培植體所生之癒合組織;或?qū)K合組織與原培植體分離增殖,移植至適當(dāng)培養(yǎng)基上誘發(fā)不定芽,可使繁殖速率增高。
培養(yǎng)基成分上常用之生長素為IAA、IBA、NAA、2,4-D,生長素有促進不定根及抑制不定芽發(fā)生作用,在誘發(fā)不定芽形成時常須要降低生長素濃度,以期避免根之形成而無不定芽。另一個植物激素為細胞分裂素,常用者有萎黃素(Kinetin)、玉米素(Zeatin)、苯甲腺漂呤(Benzyladenine)等,它具有促進不定芽發(fā)生之效果,對發(fā)根有抑制作用。在培養(yǎng)時與生長素有互相影響,一般以細胞分裂素之濃度較高時,有不定芽發(fā)生,當(dāng)兩種混合使用,也可促進不定芽發(fā)生之效果。
三、實驗方法
1.將所有器皿洗淨(jìng)
2.配置培養(yǎng)基,分裝入組織培養(yǎng)瓶中,于Autoclave高溫滅菌40分鐘,取出后待其凝固使用。(需另外準(zhǔn)備無菌水)
3.以下部分在無菌是中操作,取胡蘿蔔根用中性洗劑洗滌浸入2~1.5%次氯酸鈉溶液30分鐘后,移入無菌水中浸洗數(shù)次,用消毒過刀片切下5mm厚的組織片,以切口處平貼在培養(yǎng)基上。置于恒溫箱中40~60天(溫度25℃)
4.癒合組織再分化—以胡蘿蔔根的形成層進行逆分化實驗,再由癒合組織進行再分化條件,使其分化為跟或芽。